1．用不同方法誘導細胞調(diào)亡后，取106調(diào)亡細胞，置1.5ml離心管中，用PBS洗滌一次。在微量離心機上全速離心5秒鐘，去上清液。加入100μl含5mol/L異硫氰酸胍，100mmol/L 2-巰基乙醇的25mmol/L枸櫞酸鈉緩沖液pH7.0，在旋渦混懸器上混懸20秒鐘，破壞細胞，變性蛋白質(zhì)。
2．加入50μl含7.5mol/L醋酸氨和0.8mg/ml糖原的水溶液，混勻；加入300μl 100％乙醇，4℃保存過夜。
3．在微量離心機上全速離心30分鐘，去上清液。加入75％乙醇同樣離心洗滌沉淀物2次。用20μl含100μg/ml無DNA酶的RNA酶的TE緩沖液消化RNA，37℃ 30分鐘。加入10μl甘油和少量溴酚藍，直接點樣。
4．用50ml TAE溶解2g瓊脂糖，加入0.25μg/ml溴乙啶。倒板后加樣，用100bp DNA標記物作為標記。25mV電泳過夜。在紫外線下觀察結(jié)果。調(diào)亡細胞的DNA呈相差200bp的條帶的梯形圖。